
W konsekwencji w wierzchniej warstwie pozostałości są bardzo małe, a w głębszych warstwach zalegają dłużej przez co wzrasta ryzyko przedostania się ich do wód gruntowych. Rozkład substancji aktywnych wzrasta wraz z uwilgotnieniem gleby. Suszenie i nawilżanie gleby spowalnia rozkład tych substancji. Kolejnym procesem, jakiemu poddawane są herbicydy w glebie jest sorpcja. Jest to jeden z głównych procesów wpływających na przemieszczanie się herbicydów w glebach. Sorpcja substancji aktywnych uzależniona jest od zawartości materii organicznej i składu granulometrycznego gleby, przy czym wpływ składu chemicznego gleby na sorpcję uzależniony zależy od rodzaju substancji biologicznie czynnej. Wykazano, że zawartość i rodzaj materii organicznej, minerałów ilastych oraz pH mają największy wpływ na intensywność sorpcji herbicydów. W warunkach kwaśnego środowiska pochodne sulfonylomocznika, imidazolinony i triazyny zyskują ładunek elektryczny dodatni i są silnie absorbowane przez ujemnie naładowane cząstki gleby. Herbicydy, które w roztworze glebowym występują w formie anionowej (2,4-D, dikamba) są w niewielkim stopniu absorbowane przez glebę. W tabeli 1 przedstawiono mobilność wybranych substancji biologicznie czynnych.
Tabela 1. Charakterystyka wybranych substancji biologicznie czynnych ze względu na zdolność do przemieszczania się w glebie (Praczyk i Skrzypczak 2004).
| Mobilne (Koc < 500) | Średnio mobilne(500 < Koc < 5000) | Mało mobilne(Koc > 5000) | |
|---|---|---|---|
| 2,4-D | fluroksypyr | fenmedifam | fenoksaprop-P |
| amidosulfuron | glufosynat amonu | diflufenikan | fluazyfop-P |
| chlorotoluron | MCPA | glifosat | pendimetalina |
| dikamba | MCPB | propyzamid | - |
| florasulam | mekoprop-P | - | - |
| triflusulfuron | nikosulfuron | - | - |
| chlopyralid | rimsulfuron | - | - |
| mezotrion | tribenuron | - | - |
Koc – współczynnik sorpcji w ml/g
Trwałość herbicydów w środowisku glebowym, a pośrednio również okres ich aktywności biologicznej charakteryzuje czas połowicznego rozkładu DT50 tzn. czas konieczny do rozkładu (degradacji) substancji aktywnej do połowy jej pierwotnej koncentracji w glebie. W glebach bogatych w mikroorganizmy czas połowicznego rozkładu jest krótszy, niż w glebach jałowych. Na wielkość DT50 znaczący wpływ ma również temperatura i wilgotność. Obniżenie temperatury z 25 do 5oC może spowodować kilkukrotne wydłużenie czasu połowicznego rozkładu substancji biologicznie czynnych, a zwiększenie wilgotność podłoża skraca czas DT50 nawet o kilkanaście dni. W tabeli 2 podano podział herbicydów ze względu na czas zalegania w glebie.
Na tempo rozkładu herbicydów ma również wpływ uprawa roli. W uprawie uproszczonej dynamika rozkładu herbicydów jest wolniejsza, niż w systemie orkowym. Gleba uprawiana systemem tradycyjnym odznacza się większą pulchnością i przepuszczalnością, a więc przemieszczanie i rozkład substancji aktywnych są w niej zdecydowanie szybsze. Ponadto wykazano, że mieszaniny herbicydów z adiuwantami nieco inaczej zachowują się w środowisku glebowym, niż herbicydy stosowane samodzielnie. Preparaty z dodatkiem adiuwanta dłużej ulegają degradacji, niż aplikowane samodzielnie.
Z rolniczego punktu widzenia zbyt szybka degradacja herbicydu nie jest korzystna. Gdy poziom substancji aktywnej w glebie szybko osiąga poziom, który nie jest toksyczny dla chwastów, na polu uprawnym pojawia się tzw. zachwaszczenie wtórne. Należy zaznaczyć, że niewielka trwałość substancji biologicznie czynnej w środowisku nie świadczy jeszcze o niskiej toksyczności związku. Wykazano bowiem, że metabolity sulfonylomoczników mogą uszkadzać rośliny uprawne, a także niekorzystnie wpływać na funkcjonowanie organizmów i enzymów glebowych.
Tabela 2. Charakterystyka wybranych substancji biologicznie czynnych ze względu na okres zalegania w glebie (Praczyk i Skrzypczak 2004).
| Środki krótko zalegające (DT50 < 30 dni) | Środki o średnim okresie zalegania (DT50 30-100 dni) | Środki o długim okresie zalegania (DT50 > 100 dni) |
|---|---|---|
| 2,4-D | chlorotoluron | diflufenikan |
| MCPA | flufenacet | lenacyl |
| amidosulfuron | fluroksypyr | metrybuzyna |
| chizalofop-P etylu | chlopyralid | pendimetalina |
| dikamba | metamitron | - |
| fenmedifam | napropamid | - |
| fenoksaprop-P | - | - |
| florasulam | - | - |
| glifosat | - | - |
| rimsulfuron | - | - |
| tribenuron | - | - |
1. Praczyk T., Skrzypczak G., 2004. Herbicydy. PWRiL, Poznań.
2. Woźnica Z., 2013. Herbologia. Podstawy biologii, ekologii i zwalczania chwastów. PWRiL, Poznań.
3. Grygiel K., Sadowski J., Snopczyński T., Wysocki A., 2012. Pozostałości herbicydów w płodach rolnych i glebie. JEcolHealth 4 (16), 159–163.
4. Sadowski J., 2009. Środowiskowe skutki pozostałości herbicydów. Materiały szkoleniowe 94, ss. 61.
5. Sadowski J., Kucharski M., Sekutowski T., 2007. Ocena zagrożeń upraw następczych przez pozostałości wybranych herbicydów stosowanych w uprawach rzepaku. Prog. Plant Prot./Post. Ochr. Roślin 47 (3), 246–253.
6. Sadowski J., Sekutowski T., 2008. Wpływ uproszczeń w technice uprawy na degradację i transport pozostałości w glebie herbicydów z grupy pochodnych sulfonylomocznika. Prog. Plant Prot./Post. Ochr. Roślin 48 (4), 1242–1249.
